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Musterlösung tga hauptsache weit

Der Funktionsgewinn in Genen und Genfamilien ist ein kontinuierlicher Prozess und ein Schlüsselfaktor für das Verständnis der Gen- und Genomentwicklung in Pflanzen. TGACG-Binding (TGA) Transkriptionsfaktoren (TFs) sind seit langem für ihre wesentliche Rolle in der Pflanzenabwehr in Arabidopsis bekannt, aber ihre Rolle in der Legume-Symbiose muss noch untersucht werden. Hier identifizierten wir insgesamt 25 TGA-Gene (gmTGA1-GmTGA25) in Sojabohnen. Durch phylogenetische Analysen entdeckten wir eine Klade von GmTGA-Proteinen, die legumspezifisch zu sein scheinen. Unter ihnen waren zwei GmTGAs einzigartig, indem sie die Autophagiesequenz in ihren Proteinen besaßen, während die dritte ein Waisengen in Sojabohnen war. GmTGAs unterschieden sich strukturell von AtTGAs, und ihre Ausdrucksmuster unterschieden sich auch mit dem dominanten Ausdruck von AtTGAs und GmTGAs in Luft- und Untergrundteilen. Darüber hinaus zeigten 25 GmTGAs eine starke Korrelation zwischen der Genexpression in Wurzeln, Knötchen und Wurzelhaaren. Die QRT-PCR-Analyseergebnisse ergaben, dass von 15 getesteten GmTGAs sechs induziert und vier durch Rhizobia-Impfung unterdrückt wurden, während 11 dieser GmTGAs durch hohes Nitrat induziert wurden. Unsere Ergebnisse legten die wichtige Rolle von GmTGAs bei der symbiotischen Nodulation und als Reaktion auf die Stickstoffverfügbarkeit in Sojabohnen nahe. Sojabohnensamen wurden mit 75% Alkohol oberflächensterilisiert und in sterilisierten Töpfen mit sterilisiertem Vermiculat angebaut und mit einer Nährstofflösung bewässert, die zuvor von Wang et al.56 verwendet wurde, mit einer Modifikation, dass entweder kein Stickstoff (N2-freie Nährstofflösung) oder ein hoher Stickstoffgehalt verwendet wurde (1.174 g L-1 KNO3). Die Setzlinge wurden in drei verschiedene Schalen unterteilt und unabhängig voneinander gezüchtet und unter den irgendwo beschriebenen Bedingungen angebaut57. Sieben Tage nach der Aussaat wurden die Sämlinge einer Schale mit hoher N2-Nährstofflösung bewässert. Kontrollproben aus Wurzel und Trieb wurden kurz vor der Behandlung der Sämlinge entnommen und als 0 Stunden nach der Behandlung (HAT) betrachtet.

Die Proben wurden sofort in flüssiges N2 eingelagert und bei 80 °C für die anschließende RNA-Extraktion gelagert. Die Proben wurden bei 0, 3, 6, 12 und 24 HAT gesammelt. Der Rest der Setzlinge wurde 21 Tage lang unter hohem Stickstoffzustand angebaut. Die Samen des zweiten Tabletts wurden wie vorgeschlagen mit Rhizobia (OD = 0,08 und 30 ml Pflanze 1) geimpft58, und Proben wurden an fünf Zeitpunkten für die RNA-Extraktion gesammelt. Proben, die unmittelbar vor der Impfung entnommen wurden, wurden als 0 Stunden nach der Impfung (HAI) betrachtet. Wurzel- und Triebproben wurden bei 0, 3, 6, 12 und 24 HAI gesammelt und sofort in flüssigem N2 eingefroren und bei 80 °C für die anschließende RNA-Extraktion gelagert. Die übrigen mit Rhizobia behandelten Sämlinge sowie kein behandelter Sämling (3. Schale) wurden bis 21 Tage nach der Impfung unter stickstofffreier (N-freier) Nährstofflösung angebaut. Wurzel-, Laub- und Knötchenproben wurden 21 Tage nach der Impfung (DAI) entnommen und bei 80 °C für die RNA-Extraktion gelagert. Um den Mangel an Stickstoff (N2) Verfügbarkeit im Boden zu bewältigen, entwickeln Hülsenfrüchte spezialisierte symbiotische Organe, Wurzelknollen, durch Assoziation mit stickstoffbindenden Bakterien, genannt Rhizobia. Wurzelknollen machen Hülsenfrüchte in der Lage, atmosphärisches N2 als Stickstoffquelle für Pflanzen zu fixieren. Diese einzigartige Fähigkeit, atmosphärisches N2 zu fixieren, verschafft Hülsenwerten einen großen Vorteil beim Anbau in N2-Mangelböden und ist daher erfolgreicher im Überleben in der nährstoffbelasteten Umgebung als andere Pflanzen.

Die Etablierung der Symbiose zwischen Pflanze und Rhizobia benötigt jedoch eine Kaskade von Ereignissen in den Wurzeln von Hülsenfrüchte1.

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